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鱼组织淋巴细胞分离液
点击次数：1425 更新时间：2016-01-16
鱼组织淋巴细胞分离液
鱼组织淋巴细胞分离液说明书
【产品规格】
200ml/Kit
【产品组成】
为方便广大用户使用，试剂内容如下：
【实验前准备】名称 产品规格 编号 A 鱼组织淋巴细胞分离液 200ml B 样本稀释液（赠品） 2010C1119 200ml C 清洗液（赠品） 2010X1118 200ml D F液（赠品） F2013TBD 200ml E 说明书 1份
A．适用仪器
zui大离心力可达 1200g的水平转子离心机
B．耗材
【检验方法】产品名称 产品货号 产地 15ml离心管散装 339650 美国 NUNC 15ml离心管架装 339651 美国 NUNC 50ml离心管散装 339652 美国 NUNC 50ml离心管架装 339653 美国 NUNC 无菌胶头滴管或塑料滴管
全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。
1.首先制备组织单细胞悬液，制备方法详见“组织单细胞悬液制备技术”。
2.取一支15ml离心管，加入与组织单细胞悬液等量的分离液（注：分离液zui少不得少于
3ml）。
3.用吸管小心吸取组织单细胞悬液加于分离液液面上，400-500g，离心20-30min。（注：
根据组织单细胞悬液量确定离心条件，组织单细胞悬液量越大，离心力越大，离心时间
越长，具体离心条件需客户自行摸索，以达到*分离效果）。
4.离心后，此时离心管中由上至下分为四层。*层为稀释液层。第二层为环状乳白色淋
1.组织单细胞悬液制备技术。
巴细胞层。第三层为透明分离液层。第四层为红细胞层。
5.用吸管小心吸取第二层环状乳白色淋巴细胞层到另一15ml离心管中，向离心管中加入
10ml清洗液（产品编号：2010X1118），混匀细胞。
6.250g，离心 10min。
7.弃上清。
8.用吸管以5ml清洗液（产品编号：2010X1118）重悬所得细胞。
9.
250g，离心 10min。
10.重复 7、8、9，弃上清后以 0.5ml后续实验所需相应液体重悬细胞。
【注意事项】
1.全过程样本、试剂及实验环境均需在20±2℃的条件下进行。为获得*的实验结果，zui
好在取样 2h内进行实验，样品存放时间越长，细胞分离效果越差。样品放置超过6h后
分离效果更差甚至不能达到分离目的。
2.本实验不要使用高聚合材质（如聚苯乙烯）的塑料制品，应使用无静电、低静电离
心管及未经碱处理过后的玻璃制品，因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面
会变成毛面，影响细胞分离效果。
3.吸取过多的淋巴细胞层及分离液层会导致分离液交界处的粒细胞被吸出从而使混杂的粒
细胞数量增加。
4.分离液用量大于组织单细胞悬液样本时，分离效果更佳。
5.如实验后细胞得率或活性过低，请上海研谨生物以获得和帮助。
【储存条件及有效期】
18-25℃保存，有效期 2年。本品易感染细菌，需无菌条件操作。无菌条件下操作，启
封后置常温保存。如 4℃保存，本分离液易出现白色结晶，影响分离效果。
【参考值（参考范围）】
本实验淋巴细胞提取率及纯度大于 80%。
下表为成年人外周血中各种细胞的数量及比例，用户可适当进行参考。
【相关实验技术方案】
2.所获得淋巴细胞的培养技术。
3.所获得淋巴细胞的核酸提取技术。
4.所获得淋巴细胞的鉴定方法
A.流式细胞技术
B.免疫组化技术
C.原位杂交技术
D.PCR技术
注：上述技术方案详情请登陆上海研谨生物科技公司搜索“细胞分离、
纯化、扩增、鉴定及生物治疗技术手册”，并在说明书项目栏下下载使用。
【可能存在的问题及解决方法】
1.由于血液粘度、细胞密度等差异可能造成的问题及解决方案如下表所示：
2.本分离液分离细胞的原理为密度梯度离心，其密度与温度、大气压等密切相关。不同地出现情况 出现原因 建议解决方案 离心后目的细胞存在于血浆层或稀释液层 转速过小或离心时间过短 适当增减转速 离心后目的细胞存在于分离液中 转速过大或离心时间过长 适当增减转速 离心后白环层弥散 细胞密度过大 调整细胞密度 离心后白环层太浅或看不见 细胞密度过小 调整细胞密度
区客户可根据当地情况对离心条件进行适当调整。建议对离心条件进行调整时，恒定离
心时间，对离心转速进行调整。
3.本分离液依照标准，全部使用药用级原料，性能指标与国产同类产品略有不同，可
能出现红细胞沉降不*的情况，可以适当加大离心转速。
注：在对离心条件进行调整时，离心转速的加减以 50-100g为基数，直至达到*分离效果，
离心力zui小不得小于 400g，zui大不得大于 1200g。离心时间以 20-30min为准。
