|
| |
| 本品于 GMP 标准下生产 | |
|
|
|
人全血单个核细胞分离液说明书
【包装规格】
200ml/瓶
【实验前准备】
A． 适用仪器
zui大离心力可达 1200g 的水平转子离心机
B． 耗材
产品名称 | 产品货号 | 产地 |
|
|
|
15ml 离心管散装 | 339650 | 美国 NUNC |
|
|
|
15ml 离心管架装 | 339651 | 美国 NUNC |
|
|
|
50ml 离心管散装 | 339652 | 美国 NUNC |
|
|
|
50ml 离心管架装 | 339653 | 美国 NUNC |
|
|
|
无菌胶头滴管或塑料滴管 |
|
|
|
|
|
【检验方法】 全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。 首先根据样本量大小，分以下几种情况：
一、 使用 15ml 离心管时：
情况 A：血液样本量小于 3ml 时，实验方法如下：
1. 取一支 15ml 离心管，加入 3ml 分离液。
2. 用吸管小心吸取血液样本加于分离液之液面上，400-650g，离心 20-30min（注：根据血 液样本量确定离心条件，血液样本量越多，离心力越大，离心时间越长，具体离心条件 需客户自行摸索，以达到*分离效果）。
3. 离心后，此时离心管中由上至下分为四层。*层为血浆层。第二层为环状乳白色单个 核细胞层。第三层为透明分离液层。第四层为红细胞层。
4. 用吸管小心吸取第二层环状乳白色单个核细胞层到另一 15ml 离心管中，向所得离心管 中加入 10ml 清洗液（产品编号：2010X1118），混匀细胞。
5. 250g，离心 10min。
6. 弃上清。
7. 用吸管以 5ml 清洗液（产品编号：2010X1118）重悬所得细胞。
|
| |
| 本品只能用于科学研究，不能用于临床检测 | |
| 本品于 GMP 标准下生产 | |
|
|
|
8. 250g，离心 10min。
9. 重复 6、7、8，弃上清后以 0.5ml 后续实验所需相应液体重悬细胞。 情况 B：血液样本量为 3-6ml 时，实验方法如下：
1. 取一支 15ml 离心管，先加入与血液样本等量的分离液。
2. 用吸管小心吸取血液样本加于分离液之液面上，400-650g，离心 20-30min（注：根据血 液样本量确定离心条件，血液样本量越多，离心力越大，离心时间越长，具体离心条件 需客户自行摸索，以达到*分离效果，但zui大离心力不超过 1000g）。
3. 离心后，此时离心管中由上至下分为四层。*层为血浆层。第二层为环状乳白色单个 核细胞层。第三层为透明分离液层。第四层为红细胞层。
4. 用吸管小心吸取第二层环状乳白色单个核细胞层到另一 15ml 离心管中，向所得离心管 中加入 10ml 清洗液（产品编号：2010X1118），混匀细胞。
5. 250g，离心 10min。
6. 弃上清。
7. 用吸管以 5ml 清洗液（产品编号：2010X1118）重悬所得细胞。
8. 250g，离心 10min。
9. 重复 6、7、8，弃上清后以 0.5ml 后续实验所需相应液体重悬细胞。
二、 使用 50ml 离心管时：
情况 A：血液样本量为 6-10ml 时，实验方法如下：
1. 取一支 50ml 离心管，先加入与血液样本等量的分离液。
2. 用吸管小心吸取血液样本加于分离液之液面上，500-950g，离心 20-30min（注：根据血 液样本量确定离心条件，血液样本量越多，离心力越大，离心时间越长，具体离心条件 需客户自行摸索，以达到*分离效果，但zui大离心力不超过 1200g）。
3. 离心后，此时离心管中由上至下分为四层。*层为血浆层。第二层为环状乳白色单个 核细胞层。第三层为透明分离液层。第四层为红细胞层。
4. 用吸管小心吸取第二层环状乳白色单个核细胞层到另一 15ml 离心管中，向所得离心管 中加入 10ml 清洗液（产品编号：2010X1118），混匀细胞。
5. 250g，离心 10min。
6. 弃上清。
7. 用吸管以 5ml 清洗液（产品编号：2010X1118）重悬所得细胞。
|
| |
| 本品只能用于科学研究，不能用于临床检测 | |
| 本品于 GMP 标准下生产 | |
|
|
|
8. 250g，离心 10min。
9. 重复 6、7、8，弃上清后以 0.5ml 后续实验所需相应液体重悬细胞。 情况 B：血液样本量为 10-20ml 时，实验方法如下：
1. 取一支 50ml 离心管，先加入与血液样本等量的分离液。
2. 用吸管小心吸取血液样本加于分离液之液面上，650-110g，离心 20-30min（注：根据血 液样本量确定离心条件，血液样本量越多，离心力越大，离心时间越长，具体离心条件 需客户自行摸索，以达到*分离效果，但zui大离心力不超过 1200g）。
3. 离心后，此时离心管中由上至下分为四层。*层为血浆层。第二层为环状乳白色单个 核细胞层。第三层为透明分离液层。第四层为红细胞层。
4. 用吸管小心吸取第二层环状乳白色单个核细胞层到另一 15ml 离心管中，向所得离心管 中加入 10ml 清洗液（产品编号：2010X1118），混匀细胞。
5. 250g，离心 10min。
6. 弃上清。
7. 用吸管以 5ml 清洗液（产品编号：2010X1118）重悬所得细胞。
8. 250g，离心 10min。
9. 重复 6、7、8，弃上清后以 0.5ml 后续实验所需相应液体重悬细胞。
【注意事项】
1. 全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。为获得*的实验结果， 在取血 2h 内进行实验，血液存放时间越长，细胞分离效果越差。血液放置超过 6h 后分离效果更差甚至不能达到分离目的。
2. 本实验不要使用高聚合材质（如聚苯乙烯）的塑料制品，应使用无静电、低静电离 心管及未经碱处理过后的玻璃制品，因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面 会变成毛面，影响细胞分离效果。
3. 吸取过多的单个核细胞层及分离液层会导致分离液交界处的粒细胞被吸出从而使混杂的
粒细胞数量增加。
4. 吸取过多的单个核细胞层上层溶液会导致血浆蛋白及血小板混杂。
5. 如所实验后细胞得率或活性过低，请以寻求帮助，具体 详见下方生产企业信息。
6. 当血液样本粘度过高需稀释时，*稀释方法：将血液与样本稀释液（产品编号：
2010C1119）1:1 稀释混匀备用。注：不当的稀释方法会降低细胞得率及活性。如血液样
|
|
| 本品只能用于科学研究，不能用于临床检测 |
| 本品于 GMP 标准下生产 |
本经过稀释则分离过程中需适当降低离心力和离心时间。
【储存条件及有效期】
18-25℃保存，有效期 2 年。本品易感染细菌，需无菌条件操作。无菌条件下操作，启 封后置常温保存。如 4℃保存，本分离液易出现白色结晶，影响分离效果。 【参考值（参考范围）】
本实验淋巴细胞提取率及纯度均大于 80%。
下表为成年人外周血中各种细胞的数量及比例，用户可适当进行参考。
| 红细胞 |
| 白细胞 |
| 血小板 |
|
|
|
|
|
|
|
| （4.0-10.0）×109 |
| ||
| （4.0-5.5）×1012 |
|
|
| （1.0-3.0）×1011 |
含量（个/L） | 中性粒细胞 | 淋巴细胞 | 单核细胞 | ||
|
|
|
|
|
|
|
| 50%-70% | 20%-40% | 3%-8% |
|
|
|
|
|
|
|
【相关实验技术方案】 |
|
|
|
| |
1. 所获得淋巴细胞的培养技术。
2. 所获得淋巴细胞的核酸提取技术。
3. 所获得淋巴细胞的鉴定方法 A.流式细胞技术 B.免疫组化技术
C.原位杂交技术
D.PCR 技术 注：上述技术方案详情请登陆本搜索“细胞
分离、纯化、扩增及鉴定指导手册”，并在说明书项目栏下下载使用。 【可能存在的问题及解决方法】
1. 由于血液粘度、细胞密度等差异可能造成的问题及解决方案如下表所示：
出现情况 | 出现原因 | 建议解决方案 |
|
|
|
|
|
离心后目的细胞存在于血浆层或稀释液层 | 转速过小或离心时间过短 | 适当增减转速 |
|
|
|
| |
离心后目的细胞存在于分离液中 | 转速过大或离心时间过长 |
| |
|
| ||
|
|
|
|
离心后白环层弥散 | 细胞密度过大 | 调整细胞密度 |
|
|
|
| |
离心后白环层太浅或看不见 | 细胞密度过小 |
| |
|
| ||
|
|
|
|
2. 本分离液分离细胞的原理为密度梯度离心，其密度与温度、大气压等密切相关。不同地
|
|
| 本品只能用于科学研究，不能用于临床检测 |
| 本品于 GMP 标准下生产 |
区客户可根据当地情况对离心条件进行适当调整。建议对离心条件进行调整时，恒定离
心时间，对离心转速进行调整。
3. 本分离液依照标准，全部使用药用级原料，性能指标与国产同类产品略有不同，可
能出现红细胞沉降不*的情况，可以适当加大离心转速。
注：在对离心条件进行调整时，离心转速的加减以 50-100g 为基数，直至达到*分离效 果，离心力zui小不得小于 400g，zui大不得大于 1200g。离心时间以 20-30min 为准。
