| 问题 | 可能原因 | 解决方法 |
| 无颜色 | 试剂孵育的时间没有按说明书操作。 | 确定生物素化抗体，联接的hrp试剂或链霉亲和素-hrp使用的时间是否适当。 |
| 不同试剂盒或不同批号的试剂混用。 | 重新检查试剂的标签，确保所有组分都属于正使用的试剂盒。不能混用不同试剂盒或不同批号的试剂。 | |
| 漏加酶 | 检查操作流程，注意不要漏加 | |
| hrp酶污染了叠氮钠 | 使用新配制的试剂，禁含叠氮钠 | |
| 标准品有问题（若在标本孔中有信号） | 按说明书检查标准品的配制过程 使用1瓶新标准品 | |
| 某一容器未洗净,残留灭活酶物质 | 尽可能用试剂盒内容器,另觅一定要洁净、可靠 | |
| 使用含血清的缓冲液配制/复溶抗体 | 重新确认所选用的试剂 | |
| .漏加显色剂a或b | 加显色剂后观察孔中液面高度 | |
| 试剂配制/使用有误 | 将实验重做；严格按说明书操作，每次配制和使用前看清标签。 | |
| 缓冲液污染 | 配制新鲜的缓冲液 | |
| 显色弱 | 超过有效期的产品可能会产生很弱的信号。 | 检查产品的有效期 |
| 加入试剂的体积和时间有误 | 确定所使用的每一个试剂的体积正确和加入时间是适当。 | |
| 试剂、样品用前未能平衡 | 用前试剂、样品置室温平衡10分钟左右 | |
| 缩短孵育时间能使实验的信号变弱。 | 检查孵育的时间。 | |
| 在温度变化的环境内孵育酶标板。 | 确定孵育的温度，应避免温度的变化。 | |
| 使用了被污染的试剂 | 检查试剂是否被污染。 | |
| 标准品/标本制备方法不规范 | 检查标准品/标本的制备，标准品应按说明书进行复溶和稀释。低温贮存的标本避免反复冻融，严禁使用溶血标本。样品用nan3防腐,抑制了酶的反应 | |
| 显色底物制备不规范 | 检查底物的制备，如体积是否正确，混合是否恰当充分。 | |
| 检测时间不当 | 是否在规定的时间内检测。 | |
| 仪器设定不正确，滤光片不匹配。 | 仪器是否设定正确，滤光片的选择是否相符等。 | |
| 高背景（本底） | 洗涤操作不规范 | 洗板不充分，使用手工洗板常出现。使用洗板机，或使用洗瓶洗涤。每孔应*充满洗涤缓冲液，倾出时应迅速。若使用洗板机，应校准并设定足够充满每孔的体积量。板的内侧不应接触设备。 检查每孔是否有残留的洗液或每孔加样量的体积是否准确。在两次洗板之间加30秒的浸泡。 |
| 实验中孵育温度和时间不适当 | 确定每一实验步骤的孵育温度和时间是否适当 | |
| 酶加量过多 | 加酶前验看移液器调节量是否准确。 检查稀释度，必要时需做效价测定试验。 | |
| 封闭不* | 检查封闭液的计算量；延长封闭时间。 | |
| 标本或标准品中的干扰物质 | 做适当的对照 | |
| 显色剂受光照时间较长,或污染 | 显色剂a和b应于使用前10分钟从冰箱取出 | |
| 整批样品放置时间过长,样品污染 | 样品应保持新鲜,或低温保存,防止污染 | |
| 缓冲液污染 | 制备新鲜的缓冲液 | |
| 吸头重复使用,未洗净或消毒不*而用于加酶或显色剂 | 吸头尽可能一次性使用 | |
| 太多的信号： 全部的板子变成规则的蓝色 | 不充分的洗涤/洗涤步骤被遗漏-没结合的过氧化物酶仍有残留。 | 使用洗板机充分洗涤 检查孔内是否有残留的洗液或加样量是否准确。 |
| 底物溶液混合太早并转成蓝色 | 应控制底物混合的时机并立即使用 | |
| 太多的酶结合物 | 检查稀释度，必要时进行效价测定 | |
| 封板膜或试剂容器被重复使用，导致hrp残留，使tmb底物产生非特异蓝色。 | 使用新的封板膜，每步使用不同的试剂容器 | |
| 缓冲液中污染金属或hrp | 制备新鲜缓冲液 | |
| 高cv值（cv：coefficient of variation），花板 | 操作不慎或洗涤不充分 | 按说明书洗板、加样、显色。洗板尤为重要，如上所述 |
| 出现干板，没有使用封板膜、封板膜重复使用 | 确定每两步骤间，酶标板应保持湿润。 使用封板膜封口，注意每步使用新的封板膜。 | |
| 由于操作失误或板子质量差（结合不均匀）造成包板不均匀。 | 稀释用的pbs中不要加其它蛋白 检查包被和封闭液体积、时间和试剂加入的方法。 检查所使用的酶标板，使用elisa板（不要使用组织培养板） | |
| 移液器不准确，吸头重复使用。 | 检查并校准移液器。每次取样必须换吸头。回顾标本的加入步骤，确保每次加样的准确性，保证吸取的液体按所设定的体积吸入和排出，连续加样时注意检查吸头，确保所加液体的体积。 | |
| 样品离心处理不全,反应孔内发生凝血或残留细胞成分 | 标本充分离心, 3000rpm 6分钟以上，严禁使用凝血（溶血）的标本 | |
| 缓冲液污染 | 制备新鲜的缓冲液 | |
| 标准曲线可得到，但两点之间区别很差（低或平的曲线） | 酶结合物不足 | 检查稀释度，必要时进行效价测定 |
| 捕获抗体没有很好结合到板上 | 检查所使用的酶标板，使用elisa板（不要使用组织培养板） 稀释用的pbs中不要加其它蛋白 | |
| 检测抗体不足 | 检查稀释度，必要时进行效价测定 | |
| 板子显色不足 | 延长底物孵育实验 使用推荐品牌的底物溶液 | |
| 操作不慎 | 回顾elisa操作流程，消除任何擅自修改的程序。 | |
| 标准曲线稀释度计算有误 | 核查计算的情况，制备新的标准曲线 | |
| 标准曲线很好，但是没有任何期望的阳性信号产生 | 在标本中无相应的细胞因子 | 使用内参对照 重复实验，重新考虑实验的相应参数 |
| 标本基质遮盖检测 | 将标本至少做1∶2相应的稀释，或进行系列稀释观测它的恢复性 | |
| 标准曲线很好，但是标本的判读值很高 | 标本中含的细胞因子水平超过检测范围 | 将标本做稀释并再次实验 |
| 当使用hrp酶结合物时，tmb底物加终止液后显绿色 | 孔中的试剂显色不充分 | 轻轻振荡板子 |
| 边缘效应 | 工作环境温度不均衡 | 避免将酶标板在变化温度环境中孵育 |
| 漂移 | 实验过程中出现间断 | 整个实验应连续操作：在实验开始前将所有标准品和标本做适当的准备 |
| 试剂没有按说明书平衡至室温 | 在所有试剂加入孔前，确保它们已平衡至室温，除非说明书中有另外的要求。 | |
| 是否可更改试剂盒 所提供的实验操 作步骤？ | | 一般厂商为确保zui高的灵敏度和特异性，对试剂盒都进行了优化，为确保每一试剂盒实验的规范性应按说明书操作。 |
| 是否可混用不同试剂盒中的试剂？ | | 不允许。绝大多数试剂在每批试剂盒中是特异的，若有问题可与厂家或代理商。 |
| 是否可增加或减少标本的体积。 | | 商品化的试剂盒所需加入的标本体积是优化的，应按说明书操作，不建议更改所加标本的体积。 |
| 是否可重确定自己的标准曲线的点？ | | 可以。说明书上有建议的制备标准曲线时标准品的稀释度，可改变稀释倍数和增加曲线的点，但是必须在检测范围内，高于试剂盒中zui高标准品的点和低于灵敏度以下的点是无效的。 |
