甲基化DNA检测试剂盒说明书
DNA Methylation Kit
目录号:K2140
保存:室温
组分说明
Cat. No. K2140 K2140A
Kit Size 10 50
CT Conversion Reagent 10 reations 50 reations
M-Dissolving Buffer 10 reations(100 μl) 50 reations(粉末)
M-Dilution Buffer 400 μl 2 ml
M-Buffer PA 15 ml 60 ml
M-Wash Buffer(concentrate) 2 ml 15 ml
M-Elution Buffer 1 ml 10 ml
Buffer PS 5 ml 15 ml
Spin Column DS 10 50
Collection Tube(2ml) 10 50
产品简介
本试剂盒采用高温处理方法,缩短了转变时间,提高了转变效率,转变效率可达到 99%以上。经过 DNA亚硫酸氢盐转变,可回收得到大量 DNA。本试剂盒基本原理为 DNA 经亚硫酸氢钠处理后,可使未甲基化的胞嘧啶转变为
尿嘧啶,而甲基化的胞嘧啶不变。
本试剂盒采用硅基质膜式纯化柱通过简单的结合-洗涤-洗脱步骤,可从甲基化修饰后的溶液中回收纯化 DNA,回收的DNA 纯度高,完整性好,可直接用于测序、甲基化 PCR 检测、芯片分析、连接和转化、酶切、标记、显微注射、PCR 和体外转录等各种分子生物学实验。
注意事项
1. 产品配用方法:
(1)10次包装配制方法:CT Conversion Reagent是固体混合物,一定要在第—次使用前制备好。将2 ml 无菌水、100μl M-Dissolving Buffer和300 μl M-Dilution Buffer加入到CT Conversion Reagent管中。 在55°C溶解并震荡直至全部溶解。在使用之前将 CT Conversion Reagent 溶液在室温(20°C -30°C)下避光保存。每管的CT Conversion Reagent是针对10次DNA 处理设计的,为了得到较好的结果, CT Conversion Reagent应当在制备后立即使用,如果不立即使用,可将CT Conversion Reagent 溶液在-20°C存储1周,使用前,请务必将存储的CT Conversion Reagent 溶液在室温下解冻,并且通过振动或颠倒2分钟以充分混匀,CT Conversion Reagent对光很敏感,所以要尽量减少在光下的暴露。
(2)50 次包装配制方法:CT Conversion Reagent、M-Dissolving Buffer 均固体混合物,一定要在第—次使用前制备好。将 5ml 无菌水加入到 M-Dissolving Buffer 中震荡溶解,待固体全部溶解后将 M-Dissolving Buffer 管中溶液全部转移至CT Conversion Reagent 管中同时补加 5.5ml 无菌水。再将 1.5ml M-Dilution Buffer 加入到 CT Conversion Reagent
管中。在 55°C 溶解并震荡直至全部溶解。在使用之前将 CT Conversion Reagent 溶液在室温 (20°C -30°C)下避光保存。每管的 CT Conversion Reagent 是针对 50 次 DNA 处理设计的,为了得到较好的结果, CT Conversion Reagent 应当在制备后立即使用,如果不立即使用,可将 CT Conversion Reagent 溶液在-20°C 存储 1 周,使用前,请务必将存储的 CT Conversion Reagent 溶液在室温下解冻,并且通过振动或颠倒 2 分钟以充分混匀,CT Conversion Reagent 对光很敏感,所以要尽量减少在光下的暴露。
2. 第一次使用前应安装试剂瓶标签的说明先在M-Wash Buffer中加入无水乙醇。
自备试剂:无水乙醇、75%乙醇
操作步骤
每次制备的 DNA 范围在 1 ng-4 μg 之间,最佳量为 500 ng-2μg。
1. 取 20 μl DNA 样品,加入到离心管(自备)中,如果样品量不足,用水补至 20μl。
2. 向 DNA 样品中加入 2.2 μl 的 M-Dilution Buffer,混匀样品。
3. 42℃水浴 30 分钟。
4. 向上步得到的样品中,加入 220 μl 配制好的 CT Conversion Reagent 溶液,混匀,80℃恒温水浴锅中避光孵育 60分钟。
5. 向上步溶液中加入 480 μl M- Buffer PA,温和上下颠倒混匀。
6. 柱平衡:向已装入收集管(Collection Tube)的吸附柱(Spin Column CS)中加入 200 μl Buffer PS,12,000 rpm(~13,400×g)离心 2 分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
7. 将步骤 5 所得溶液全部加入到吸附柱(已装入收集管)中,室温放置 2 分钟,12,000 rpm 离心 1 分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
注意:吸附柱最大容量为700 μl,若样品体积大于700 μl可分批加入 。
8. 向吸附柱中加入 500 μl M- Buffer PA,12,000 rpm 离心 1 分钟,倒掉收集管中的废液, 将吸附柱放回收集管中。
9. 向吸附柱中加入 650 μl M-Wash Buffer(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12,000 rpm 离心 1 分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
10. 12,000 rpm 离心 2 分钟,倒掉废液,将吸附柱置于室温数分钟,以*晾干。
注意:这一步的目的是将吸附柱中残余乙醇去除,乙醇残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)
11. 将吸附柱放入一个新的离心管(自备)中,向吸附膜中间位置悬空滴加 20 μl M-Elution Buffer(pH 8.5),室温放置 2 分钟。12,000 rpm 离心 1 分钟收集 DNA 溶液。
12. 向收集的 20 μl DNA 中加入 2.2 μl M-Dilution Buffer,室温静止 30 分钟。
13. 向溶液中加入 500 μl 预冷的无水乙醇颠倒混匀,沉淀 30 分钟(建议置于-20℃沉淀,过夜沉淀效果更好)。
14. 12,000 rpm 离心 15 分钟,轻轻倒掉上清,再用 75%乙醇洗涤一次。
15. 12,000 rpm 离心 1 分钟,倒掉上清,室温下待乙醇挥发后,加入 20 μl M-Elution Buffer 溶解,DNA 置于-20℃保存。此步收集的 DNA 可以用于后续相关实验。
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